Quels sont les processus de culture artificielle des champignons noirs?

La préparation des bâtons de culture de champignons noirs (sacs de substrat) est similaire à celui utilisé pour la plupart Les champignons comestibles et médicinaux de déduction en bois

Formule de substrat

Formule 1: 88% de sciure, 8% de son de blé, 2% de farine de soja, 1% de gypse, 1% de chaux.

Formule 2: 90% de sciure de bois, 6% de son de blé, 2% de farine de soja, 1% de gypse, 0,5% de chaux, 0,5% de carbonate de calcium léger.

Mélange

Préparez les matériaux en fonction de la formule. Mélanger sec pendant 8 minutes, puis ajouter de l'eau et mélanger pendant au moins 30 minutes jusqu'à même. L'humidité finale du substrat doit être de 55%–59%, et le pH devrait être 7–8 (tombant à 6.2–6.5 après stérilisation).

Garniture du sac

Utilisez des sacs en polyéthylène à basse pression avec un diamètre plié de 16 cm. Une machine de remplissage entièrement automatique termine la garniture des sacs, la mise en forme des trous, l'insertion du bâton, le chargement dans les caisses, le retournement et les étagères. Chaque sac de substrat (bâton de culture) mesure 22 cm de haut, pèse 1,400–1 450 g, avec un joint serré et lisse et une forme uniforme. Les sacs sont transférés via le convoyeur et les systèmes de retournement de l'unité d'étagère, surveillés par le personnel.

Étagères et chargement dans le stérilisateur

Les machines à étagères poussent des caisses dans les supports de stérilisation, qui sont ensuite transférés par chariot élévateur dans un autoclave à haute pression pour la stérilisation.

Stérilisation

La stérilisation de la pression sous vide est utilisée, après un programme de température multiphasique: Première étape: 98–102°C, maintenez 30 minutes

Deuxième étape: 110–115°C, maintenir pendant 15 minutes la phase finale: 121°C pendant 90 minutes. La stérilisation atmosphérique est également utilisée dans certains cas.

Refroidissement

Après stérilisation, les bâtons de substrat sont déplacés vers une salle tampon équipée de filtres à air primaire et moyen à refroidir, puis transférés dans une forte salle de refroidissement.

Inoculation

Avant l'inoculation, les travailleurs doivent suivre les procédures stériles: porter des vêtements stériles, des casquettes, des masques et des chaussures, passer par une douche aérienne et préparer des matériaux à l'avance. La salle d'inoculation doit avoir des filtres HEPA et la machine d'inoculation doit être positionnée directement en dessous d'une unité HEPA pour maintenir la propreté de classe 100. La pièce doit maintenir une pression positive, avec un flux d'air dirigé de la salle d'inoculation à la zone de mise en scène. Voir la section "Spawn" pour référence.

Points clés: Pendant l'inoculation, la température du bâton de culture doit être contrôlée à 25 ~ 30 ℃, et le volume d'inoculation de la culture liquide doit être contrôlé à 25 ~ 30 ml pour empêcher le liquide bactérien de pulvériser du sac. Le bouchon d'éponge doit être inséré dans le trou d'inoculation d'environ 5 mm. Pendant l'inoculation, le volume d'inoculation doit être mesuré toutes les 30 minutes et le pistolet d'inoculation doit être désinfecté avec 75% d'alcool.

Procédure:

Ajustez la pression du réservoir de spawn à 0.05–0,1 MPa. Ouvrez la valve, purgez la ligne, vérifiez le volume d'injection et commencez à inoculation une fois le volume précis.

Rayonnage

Après l'inoculation, les sacs de substrat sont transférés dans une salle de culture reliée à la zone stérile. Étiquetez chaque rack avec la date d'ensachage, le temps d'inoculation, la tension, le numéro du réservoir et le numéro de ligne d'inoculation.